1 緒論
1.1 鉀營養(yǎng)與棉花生長
1.2 激素調(diào)節(jié)與鉀營養(yǎng)
1.3 不同鉀營養(yǎng)與冠菌素調(diào)節(jié)下的葉綠素?zé)晒庾兓?br />1.4 質(zhì)外體汁液提取方法優(yōu)化
1.5 氧化還原平衡
1.5.1 活性氧的產(chǎn)生
1.5.2 活性氧的作用
1.5.3 活性氧的清除
1.5.3.1 氧化脅迫程度
1.5.3.2 抗氧化物酶
1.5.3.3 非酶抗氧化物含量及非酶抗氧化能力
1.6 代謝組
1.7 蛋白組
1.8 研究目的與意義
2 鉀營養(yǎng)與冠菌素對(duì)棉花生長的調(diào)節(jié)
2.1 實(shí)驗(yàn)材料與方法
2.1.1 實(shí)驗(yàn)材料
2.1.1.1 培養(yǎng)條件
2.1.1.2 幼苗培養(yǎng)及處理設(shè)計(jì)
2.1.2 實(shí)驗(yàn)方法
2.1.2.1 根系形態(tài)掃描
2.1.2.2 棉花幼苗根系及葉片鮮重與干重
2.1.2.3 棉花幼苗根系活力
2.2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
2.2.1 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)根系形態(tài)生長的影響
2.2.2 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)根系及葉片鮮重與干重的影響
2.2.3 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)根系活力的影響
2.3 討論與結(jié)論
3 鉀營養(yǎng)與冠菌素調(diào)節(jié)下棉花葉綠素?zé)晒?br />3.1 實(shí)驗(yàn)材料與方法
3.1.1 實(shí)驗(yàn)材料
3.1.2 實(shí)驗(yàn)方法
3.1.2.1 子葉葉綠素含量測定
3.1.2.2 子葉葉綠素?zé)晒鉁y定
3.2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
3.2.1 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)子葉葉綠素的影響
3.2.2 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)子葉葉綠素?zé)晒獾挠绊?br />3.2.2.1 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平在黑暗條件下對(duì)子葉PSⅡ與PSⅠ葉綠素?zé)晒鈪��?shù)的影響
3.2.2.2 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平在半飽和光照強(qiáng)度條件下對(duì)子葉PSIⅡ與PSⅠ葉綠素?zé)晒鈹M合參數(shù)的影響
3.3 討論與結(jié)論
4 棉花幼苗AWF提取方法建立與優(yōu)化
4.1 材料與方法
4.1.1 幼苗培養(yǎng)方法
4.1.2 AWF分離方法建立與優(yōu)化
4.1.2.1 取樣方法優(yōu)化
4.1.2.2 抽真空條件優(yōu)化
4.1.2.3 離心力和離心時(shí)間條件優(yōu)化
4.2 結(jié)果與分析
4.2.1 AWF分離取樣方法優(yōu)化
4.2.1.1 根系A(chǔ)WF分離取樣方法優(yōu)化
4.2.1.2 子葉AWF分離取樣方法優(yōu)化
4.2.2 AWF分離抽真空條件優(yōu)化
4.2.2.1 樣品是否需要抽真空優(yōu)化
4.2.2.2 需抽真空的真空條件優(yōu)化
4.2.3 AWF分離離心力和離心時(shí)間優(yōu)化
4.2.3.1 根系A(chǔ)WF分離離心力和離心時(shí)間優(yōu)化
4.2.3.2 子葉AWF分離離心力和離心時(shí)間優(yōu)化
4.3 討論
4.3.1 AWF分離時(shí)取樣組織整體性
4.3.2 真空滲透-離心法與直接離心法
5 鉀營養(yǎng)與棉花AWF氧化還原平衡
5.1 實(shí)驗(yàn)材料與方法
5.1.1 幼苗培養(yǎng)與AWF獲得方法
5.1.2 實(shí)驗(yàn)方法
5.1.2.1 可溶性蛋白含量和MDH酶活性測定
5.1.2.2 過氧化氫含量測定
5.1.2.3 超氧陰離子含量測定
5.1.2.4 氧化脅迫程度指標(biāo)測定
5.1.2.5 抗氧化酶活性測定
5.1.2.6 非酶抗氧化物含量和非酶抗氧化能力測定
5.2 結(jié)果與分析
5.2.1 AWF和SWF的可溶性蛋白含量之比、MDH酶活性之比
5.2.2 過氧化氫含量
5.2.3 超氧陰離子含量
5.2.4 氧化脅迫程度
5.2.5 抗氧化酶活性
5.2.6 非酶抗氧化物含量和非酶抗氧化能力
5.2.6.1 非酶抗氧化物含量
5.2.6.2 非酶抗氧化能力
5.3 討論與結(jié)論
6 鉀營養(yǎng)與棉花AWF代謝組
6.1 實(shí)驗(yàn)材料與方法
6.1.1 實(shí)驗(yàn)材料
6.1.2 實(shí)驗(yàn)方法
6.1.2.1 樣品制備
6.1.2.2 色譜質(zhì)譜采集條件
6.1.2.3 代謝物定性與定量原理
6.2 結(jié)果與分析
6.2.1 LK和LKCOR處理根系和子葉AWF代謝組主成分分析
6.2.2 差異代謝物篩選結(jié)果
6.2.2.1 初級(jí)代謝物
6.2.2.2 次級(jí)代謝物
6.2.3 差異代謝物聚類分析
6.2.4 差異代謝物數(shù)目統(tǒng)計(jì)
6.2.5 KEGG通路富集
6.3 討論與結(jié)論
7 鉀營養(yǎng)與棉花AWF蛋白組
7.1 實(shí)驗(yàn)材料與方法
7.1.1 實(shí)驗(yàn)材料
7.1.2 AWF蛋白組檢測方法
7.1.2.1 根系A(chǔ)WF純化
7.1.2.2 蛋白質(zhì)提取和肽段酶解
7.1.2.3 LC-MS/MS數(shù)據(jù)采集
7.1.2.4 蛋白質(zhì)鑒定和定量分析
7.1.2.5 生物信息學(xué)分析
7.2 不同鉀營養(yǎng)水平及冠菌素調(diào)控低鉀水平對(duì)根系A(chǔ)WF蛋白組的影響
7.2.1 實(shí)驗(yàn)和生物信息學(xué)
7.2.2 差異表達(dá)蛋白質(zhì)篩選
7.2.3 差異表達(dá)蛋白質(zhì)聚類分析
7.2.4 差異表達(dá)蛋白質(zhì)GO功能富集分析
7.2.5 差異表達(dá)蛋白質(zhì)KEGG通路富集分析
7.3 討論與結(jié)論
主要參考文獻(xiàn)
附表1 LK（0.05mmol·L-1KCl）/HK（2.5mmol·L-1KCI）,棉花根系A(chǔ)WF中顯著差異代謝物
附表2 LKCOR（0.05mmol·L-1KCl 10nmol·L-1COR）/HK（2.5mmol·L-1KCI），棉花根系A(chǔ)WF中顯著差異代謝物
附表3 LKC